Jeg har for noget tid siden skrevet en tek nederst i topic
Samlet viden/guldkorn. Herefter har Om Shanti og jeg korresponderet lidt omkring den, og nu synes jeg der skal beviser på bordet!
Så har du en growbox bedes du efterprøve den 
Og derved berige bordet med endnu mere god viden, som alle kan bruge.
En korrespondance Om Shanti og jeg imellem:
And skrev:
Jeg deler det lige lidt op, så det er nemmere at have med at gøre.
Citat:
...Hvis det er det skal du i hvert fald udførligt forklare alle trin og ikke bare antage at folk ved hvordan man fx laver et glas med et låg man kan lukke (for fx flydende kultur kan jo ret hurtigt gære hvis der ikke kommer frisk luft til) eller steriliserer rug osv. (og hvilken nybegynder med growkit har en trykkoger, som er nødvendig for at sterilisere rug?).
Det kan man jo læse i tråden, både under pf-tek og flimmers guide Trykkoger løsninger kan man vel søge sig frem til, og det vil jeg lige tilføje, evt. med et link.
Piercer's guide er som standard pf tek baseret på at man lægger et vermiculitefilter i toppen, og det kan man jo ikke hvis man skal starte det med mycelie istedet for sprøjte. Jeg mener også der er skrevet noget om låg af forskellig art i en tråd eller to, så det kan du jo enten klippe ind eller linke til. Egentlig er det vel bedst at klippe det ind? Det er der næppe nogen, der bliver fornærmede over.
Citat:
Er kontaminationsrisikoen virkelig noget at tale om, selv hvis man efterbehandler med 3% brintoverilte som jeg er inde på?
Citat:
forslag om det kloning af indvendige
Ja, det er måske renere, men det er ikke meget kød man kan få frem af den i forhold til når man bruger mediet. Og 3% brintoverilte er ret skrapt og hårdt for myceliet, det falder helt fra hinanden. Min idé med at bruge h2o2 er at det er langt nemmere at have med at gøre, end sporer, da man ikke har samme afhængighed af sterilitet og en glovebox.
Men 1) myceliet er nok ikke så rent, som jeg nævnte. Du har ret i at h2o2 i princippet burde kunne slå hvad som helst af grimme sporer ihjel. Jeg ville som sagt foretrække at tage svampekødet og så evt som Flimmer fortynde h2o2en. Men om det er i VIRKELIGHEDEn er bedre end din idé med at tage myceliet direkte, det kan vel kun forsøg vise. Måske vil den større mængde mycelie kolonisere glasset så hurtigt, så det kompenserer for evt urenheder som evt undslap h2o2en.!?
2) man skal åbne glasset med det steriliserede medie i for at dumpe det h2o2 behandlede mycelie i. I min erfaring er det ikke for sjov at man ikke skal åbne sine nysteriliserede glas med mindre de er i en glovebox, og selv i en glovebox er det ikke risikofrit. Med den første teknik du nævner skal man åbne alle glas man vil starte - med mindre man laver en LC som i teknik 2.
Jeg har aldrig forsøgt at starte noget et steriliseret medie med noget "brugt" mycelie så jeg siger ikke at det ikke kan fungere! Hvis du har gjort det - og endda uden glovebox - og med en høj succesrate så må mit ræsonnement vel være forkert. Og hvis du har gjort det i glovebox med succes har du i hvertfald ret i del 1 - at der ikke er grund til at tro at det er bedre at tage noget af det indre svampekød.
En anden mulighed er at man kunne tage hele growkittet rub og stub og rense det, dyppe lidt i brintoverilte og så smuldre det i pasteuriseret hestemøg.. så er mediet lidt mindre følsomt overfor små mugsporer end steriliseret rug/pf kager i hvert fald. Men jeg har aldrig prøvet det.
Citat:
Sukker virker jo som et naturligt konserveringsmiddel, og desuden bliver det spist af myceliet? Ydermere er min tankegang igen, at det er lettere at arbejde med mycelie end sporer. At kulturen skal i køleskabet har jeg vist glemt at nævne, tog det som en selvfølge.
Men kan du ikke fortælle mig lidt om disse "culture slants"?
Jeg vil ikke lægge hovedet på blokken for min påstand om at sporeprint holder længere, for jeg har lige fundet en link til en log af et grow der blev startet på en angiveligt ni år gammel LC, som ikke engang havde været på køl. Så det kan godt ske du har ret i det.
Culture slants - Cubensis svampe er jo meget nemme at få til at give frugter, men det er der mange spisesvampe som ikke er. Så det er særligt disse som proff dyrkerne meget gerne vil tage backup af - af deres bedste kloner.
Jeg har kun læst om culture slants i Stamets' "Growing gourmet and medicinal mushrooms" og set Rodger Rabbits video så istedet for at jeg bilder dig noget ind er det nok bedre du selv ser fx videoen. Det er sidste afsnit på ca. 11-12 minutter af hans serie.
http://www.blunted.us/df/video/Let%27s% ... ushrooms!/Det er selvfølgelig til en vis grad subjektivt om det er "lettest" at bruge sporer eller LC. Jeg synes personligt sporer er lettest. Fordelen ved LC, synes jeg, er hvis man har en god klon man gerne vil bruge til en masse glas. Eller som en måde at multiplicere mængden af sporeopløsning hvis man har meget få sporer. Jeg kan også godt se, hvis folk vil pode meget store glas eller poser med substrat, at det har en fordel. Men hvis der ikke er nogen af de ovennævnte problemstillinger tilstede så vil jeg hellere være fri.
Som jeg skrev synes jeg din guide overordnet set er god, men synes bare den skal forsynes med en Caveat, for jeg synes ikke det er for absolutte noobs.
Hvis det er en god klon i growkittet er det jo slet ikke dumt at arbejde videre med den. Den er mindst ligeså 'advanceret' som fx Flimmers kloning guide IMHO.
Til folk der end ikke har holdt en sprøjte i hånden før vil jeg til en hver tid anbefale standard PF tek, fordi den har højest succesrate i min erfaring. Men det er jo godt der er forskellige teks at vælge imellem, så det ikke bliver alt for kedeligt.
og jeg vil da forsøge om jeg kan gøre dig nummeret efter med en udpint kage her i den nærmeste fremtid!
Yderligere kommentarer er også meget velkommende.
Log ind
Tilmeld
OSS
Søg
og så med østers selvf 